Moduł oferowany także w ramach programów studiów:
Informacje ogólne:
Nazwa:
Chemia analityczna w kryminalistyce
Tok studiów:
2019/2020
Kod:
HNKT-1-511-s
Wydział:
Humanistyczny
Poziom studiów:
Studia I stopnia
Specjalność:
-
Kierunek:
Nowoczesne technologie w kryminalistyce
Semestr:
5
Profil:
Ogólnoakademicki (A)
Język wykładowy:
Polski
Forma studiów:
Stacjonarne
Prowadzący moduł:
prof. nadzw. dr hab. inż. Baś Bogusław (bas@agh.edu.pl)
Treści programowe zapewniające uzyskanie efektów uczenia się dla modułu zajęć

W ramach modułu studenci zapoznają się z instrumentalnymi metodami analizy chemicznej stosowanymi w kryminalistyce. Poznają zasady wyboru metody analizy w oparciu o przewidywany zakres stężenia analitu, wpływ matrycy i wielkość próbki. Poznają podstawy teoretyczne metod, obsługi aparatury, zasady poboru, utrwalania i przygotowania próbek. Poznają reguły projektowania procesów analitycznych z uwzględnieniem podstawowych elementów przetwarzania sygnałów, statystycznej oceny wyników i walidacji.

Opis efektów uczenia się dla modułu zajęć
Kod MEU Student, który zaliczył moduł zajęć zna i rozumie/potrafi/jest gotów do Powiązania z KEU Sposób weryfikacji i oceny efektów uczenia się osiągniętych przez studenta w ramach poszczególnych form zajęć i dla całego modułu zajęć
Wiedza: zna i rozumie
M_W001 Zna podstawową terminologię, pojęcia oraz prawa fizyczne i chemiczne, na których oparte są spektrometryczne, chromatograficzne i elektrochemiczne metody jakościowej i ilościowej analizy chemicznej. NKT1A_W06 Kolokwium,
Zaliczenie laboratorium,
Wykonanie ćwiczeń laboratoryjnych,
Egzamin
M_W002 Zna podstawy teoretyczne klasycznej spektroskopii absorpcyjnej w zakresie promieniowania ultrafioletowego (UV) i widzialnego (Vis), atomowej spektroskopii absorpcyjnej (ASA) zastosowania tych technik w kryminalistyce, a także zasady przygotowania próbek do analizy, interpretacji widm, kalibracji i walidacji metody. NKT1A_W06 Udział w dyskusji,
Zaliczenie laboratorium,
Kolokwium,
Wykonanie ćwiczeń laboratoryjnych,
Egzamin
M_W003 Zna podstawy teoretyczne emisyjnej spektrometrii atomów pobudzonych termicznie (fotometrii FAES), zastosowania tej techniki w kryminalistyce oraz zasady przygotowania próbek do analizy, kalibracji i walidacji metody. NKT1A_W06 Zaliczenie laboratorium,
Wykonanie ćwiczeń laboratoryjnych,
Udział w dyskusji,
Kolokwium,
Egzamin
M_W004 Zna podstawy teoretyczne pomiarów przewodnictwa elektrolitycznego roztworów (konduktometrii), stosowania metod pośrednich (miareczkowanie konduktometryczne), pomiarów siły elektromotorycznej (potencjometria), stosowania metod pośrednich (miareczkowanie potencjometryczne), doboru elektrod wskaźnikowych, zastosowania tych technik w kryminalistyce, a także zasady przygotowania próbek do analizy, kalibracji i walidacji metody. NKT1A_W06 Zaliczenie laboratorium,
Wykonanie ćwiczeń laboratoryjnych,
Udział w dyskusji,
Kolokwium,
Egzamin
M_W005 Zna podstawy teoretyczne woltamperometrii i różnych technik rejestracji sygnałów, doboru elektrod i elektrolitów, wykonywania analiz specjacyjnych, zastosowania tych technik w kryminalistyce, a także zasady przygotowania próbek do analizy, kalibracji i walidacji metody. NKT1A_W06 Zaliczenie laboratorium,
Wykonanie ćwiczeń laboratoryjnych,
Udział w dyskusji,
Kolokwium,
Egzamin
M_W006 Zna podstawy teoretyczne chromatografii gazowej, chromatografii cieczowej i spektrometrii mas oraz zastosowania tych technik w kryminalistyce. NKT1A_W06 Zaliczenie laboratorium,
Wykonanie ćwiczeń laboratoryjnych,
Udział w dyskusji,
Kolokwium,
Egzamin
M_W007 Zna podstawy teoretyczne typowych metod screeningowych (polowych) analizy chemicznej, oraz zakresy ich stosowalności w kryminalistyce. NKT1A_W06 Zaliczenie laboratorium,
Wykonanie ćwiczeń laboratoryjnych,
Udział w dyskusji,
Kolokwium,
Egzamin
M_W008 Zna zasada poboru, konserwacji, przechowywania i przygotowania próbek do analizy. Zna kryteria wyboru metod analizy i zasady projektowania procedury analitycznej z uwzględnieniem parametrów walidacji. Zna zasady bezpiecznej pracy z substancjami chemicznymi. Zna zasady obsługi typowych urządzeń i aparatury pomiarowej stosowanej w analizie instrumentalnej. NKT1A_W06 Zaliczenie laboratorium,
Wykonanie ćwiczeń laboratoryjnych,
Udział w dyskusji,
Kolokwium,
Egzamin
Umiejętności: potrafi
M_U001 Planować i przeprowadzać eksperymenty, prowadzić pomiary wybranych wielkości chemicznych i fizycznych oraz interpretować uzyskane wyniki i wyciągać wnioski NKT1A_U09, NKT1A_U06 Zaliczenie laboratorium,
Zaangażowanie w pracę zespołu,
Wykonanie ćwiczeń laboratoryjnych,
Kolokwium,
Egzamin,
Aktywność na zajęciach
M_U002 Stosować metody analityczne, eksperymentalne i symulacyjne do formułowania i rozwiązywania złożonych i nietypowych zadań z zakresu instrumentalnej analizy chemicznej NKT1A_U09 Zaliczenie laboratorium,
Zaangażowanie w pracę zespołu,
Wykonanie ćwiczeń laboratoryjnych,
Kolokwium,
Egzamin,
Aktywność na zajęciach
M_U003 Potrafi pobrać i przygotować próbki do badań metodą: spektroskopii emisyjnej i absorpcyjnej, chromatografii i spektrometrii mas, konduktometrii, potencjometrii i woltamperometrii. Potrafi określić optymalne warunki i parametry pomiarów z uwzględnieniem specyficznych wymagań każdej z ww. metod NKT1A_U09, NKT1A_U06 Zaliczenie laboratorium,
Zaangażowanie w pracę zespołu,
Wykonanie ćwiczeń laboratoryjnych,
Kolokwium,
Egzamin,
Aktywność na zajęciach
M_U004 Potrafi interpretować typowe widma i dane pomiarowe otrzymane metodami spektroskopowymi, chromatograficznymi, elektrochemicznymi i spektrometrii mas. NKT1A_U09, NKT1A_U06 Zaliczenie laboratorium,
Zaangażowanie w pracę zespołu,
Wykonanie ćwiczeń laboratoryjnych,
Kolokwium,
Egzamin
M_U005 Potrafi czytać ze zrozumieniem fachową literaturę z dziedziny instrumentalnej analityki chemicznej. Wyciągać logiczne wnioski z przeprowadzonych badań, projektować procedury analityczne i planować dalsze eksperymenty, konstruktywnie współpracować z zespołem. NKT1A_U09, NKT1A_U06 Zaliczenie laboratorium,
Zaangażowanie w pracę zespołu,
Wykonanie ćwiczeń laboratoryjnych,
Kolokwium,
Egzamin
M_U006 Potrafi posługiwać się sprzętem laboratoryjnym, przeprowadzać operacje związane z poborem i przygotowaniem próbki do analizy, obsługiwać urządzenia i systemy pomiarowe. Umie zastosować się do podstawowych zasad bezpieczeństwa związanych z używaniem specyficznych substancji chemicznych. NKT1A_U09 Zaliczenie laboratorium,
Zaangażowanie w pracę zespołu,
Wykonanie ćwiczeń laboratoryjnych,
Kolokwium,
Egzamin
M_U007 Potrafi stosować metody screeningowe (polowe) na etapie analiz wstępnych i przesiewowych. NKT1A_U09 Zaliczenie laboratorium,
Zaangażowanie w pracę zespołu,
Wykonanie ćwiczeń laboratoryjnych,
Kolokwium,
Egzamin
Kompetencje społeczne: jest gotów do
M_K001 Potrafi krytycznie weryfikować swoją wiedzę, potrafi pracować w grupie, zasięgać opinii ekspertów. NKT1A_K04, NKT1A_K01 Zaangażowanie w pracę zespołu,
Udział w dyskusji,
Aktywność na zajęciach
M_K002 Ma świadomość roli społecznej absolwenta uczelni technicznej, rozumie potrzebę formułowania i przekazywania społeczeństwu informacji i opinii dotyczących osiągnięć techniki i innych aspektów działalności inżynierskiej. NKT1A_K02 Zaangażowanie w pracę zespołu,
Udział w dyskusji,
Aktywność na zajęciach
M_K003 Rozumie potrzebę ciągłego aktualizowania i poszerzania wiedzy z zakresu chemii i instrumentalnej analizy chemicznej. NKT1A_K04, NKT1A_K01 Zaangażowanie w pracę zespołu,
Udział w dyskusji,
Aktywność na zajęciach
Liczba godzin zajęć w ramach poszczególnych form zajęć:
SUMA (godz.)
Wykład
Ćwicz. aud
Ćwicz. lab
Ćw. proj.
Konw.
Zaj. sem.
Zaj. prakt
Zaj. terenowe
Zaj. warsztatowe
Prace kontr. przejść.
Lektorat
90 50 0 40 0 0 0 0 0 0 0 0
Matryca kierunkowych efektów uczenia się w odniesieniu do form zajęć i sposobu zaliczenia, które pozwalają na ich uzyskanie
Kod MEU Student, który zaliczył moduł zajęć zna i rozumie/potrafi/jest gotów do Forma zajęć dydaktycznych
Wykład
Ćwicz. aud
Ćwicz. lab
Ćw. proj.
Konw.
Zaj. sem.
Zaj. prakt
Zaj. terenowe
Zaj. warsztatowe
Prace kontr. przejść.
Lektorat
Wiedza
M_W001 Zna podstawową terminologię, pojęcia oraz prawa fizyczne i chemiczne, na których oparte są spektrometryczne, chromatograficzne i elektrochemiczne metody jakościowej i ilościowej analizy chemicznej. + - - - - - - - - - -
M_W002 Zna podstawy teoretyczne klasycznej spektroskopii absorpcyjnej w zakresie promieniowania ultrafioletowego (UV) i widzialnego (Vis), atomowej spektroskopii absorpcyjnej (ASA) zastosowania tych technik w kryminalistyce, a także zasady przygotowania próbek do analizy, interpretacji widm, kalibracji i walidacji metody. + - + - - - - - - - -
M_W003 Zna podstawy teoretyczne emisyjnej spektrometrii atomów pobudzonych termicznie (fotometrii FAES), zastosowania tej techniki w kryminalistyce oraz zasady przygotowania próbek do analizy, kalibracji i walidacji metody. + - + - - - - - - - -
M_W004 Zna podstawy teoretyczne pomiarów przewodnictwa elektrolitycznego roztworów (konduktometrii), stosowania metod pośrednich (miareczkowanie konduktometryczne), pomiarów siły elektromotorycznej (potencjometria), stosowania metod pośrednich (miareczkowanie potencjometryczne), doboru elektrod wskaźnikowych, zastosowania tych technik w kryminalistyce, a także zasady przygotowania próbek do analizy, kalibracji i walidacji metody. + - + - - - - - - - -
M_W005 Zna podstawy teoretyczne woltamperometrii i różnych technik rejestracji sygnałów, doboru elektrod i elektrolitów, wykonywania analiz specjacyjnych, zastosowania tych technik w kryminalistyce, a także zasady przygotowania próbek do analizy, kalibracji i walidacji metody. + - + - - - - - - - -
M_W006 Zna podstawy teoretyczne chromatografii gazowej, chromatografii cieczowej i spektrometrii mas oraz zastosowania tych technik w kryminalistyce. + - + - - - - - - - -
M_W007 Zna podstawy teoretyczne typowych metod screeningowych (polowych) analizy chemicznej, oraz zakresy ich stosowalności w kryminalistyce. + - + - - - - - - - -
M_W008 Zna zasada poboru, konserwacji, przechowywania i przygotowania próbek do analizy. Zna kryteria wyboru metod analizy i zasady projektowania procedury analitycznej z uwzględnieniem parametrów walidacji. Zna zasady bezpiecznej pracy z substancjami chemicznymi. Zna zasady obsługi typowych urządzeń i aparatury pomiarowej stosowanej w analizie instrumentalnej. + - + - - - - - - - -
Umiejętności
M_U001 Planować i przeprowadzać eksperymenty, prowadzić pomiary wybranych wielkości chemicznych i fizycznych oraz interpretować uzyskane wyniki i wyciągać wnioski - - + - - - - - - - -
M_U002 Stosować metody analityczne, eksperymentalne i symulacyjne do formułowania i rozwiązywania złożonych i nietypowych zadań z zakresu instrumentalnej analizy chemicznej - - + - - - - - - - -
M_U003 Potrafi pobrać i przygotować próbki do badań metodą: spektroskopii emisyjnej i absorpcyjnej, chromatografii i spektrometrii mas, konduktometrii, potencjometrii i woltamperometrii. Potrafi określić optymalne warunki i parametry pomiarów z uwzględnieniem specyficznych wymagań każdej z ww. metod + - + - - - - - - - -
M_U004 Potrafi interpretować typowe widma i dane pomiarowe otrzymane metodami spektroskopowymi, chromatograficznymi, elektrochemicznymi i spektrometrii mas. + - + - - - - - - - -
M_U005 Potrafi czytać ze zrozumieniem fachową literaturę z dziedziny instrumentalnej analityki chemicznej. Wyciągać logiczne wnioski z przeprowadzonych badań, projektować procedury analityczne i planować dalsze eksperymenty, konstruktywnie współpracować z zespołem. - - + - - - - - - - -
M_U006 Potrafi posługiwać się sprzętem laboratoryjnym, przeprowadzać operacje związane z poborem i przygotowaniem próbki do analizy, obsługiwać urządzenia i systemy pomiarowe. Umie zastosować się do podstawowych zasad bezpieczeństwa związanych z używaniem specyficznych substancji chemicznych. - - + - - - - - - - -
M_U007 Potrafi stosować metody screeningowe (polowe) na etapie analiz wstępnych i przesiewowych. - - + - - - - - - - -
Kompetencje społeczne
M_K001 Potrafi krytycznie weryfikować swoją wiedzę, potrafi pracować w grupie, zasięgać opinii ekspertów. - - - - - - - - - - -
M_K002 Ma świadomość roli społecznej absolwenta uczelni technicznej, rozumie potrzebę formułowania i przekazywania społeczeństwu informacji i opinii dotyczących osiągnięć techniki i innych aspektów działalności inżynierskiej. - - - - - - - - - - -
M_K003 Rozumie potrzebę ciągłego aktualizowania i poszerzania wiedzy z zakresu chemii i instrumentalnej analizy chemicznej. + - - - - - - - - - -
Nakład pracy studenta (bilans punktów ECTS)
Forma aktywności studenta Obciążenie studenta
Sumaryczne obciążenie pracą studenta 180 godz
Punkty ECTS za moduł 6 ECTS
Udział w zajęciach dydaktycznych/praktyka 90 godz
Przygotowanie do zajęć 34 godz
przygotowanie projektu, prezentacji, pracy pisemnej, sprawozdania 20 godz
Samodzielne studiowanie tematyki zajęć 29 godz
Egzamin lub kolokwium zaliczeniowe 2 godz
Dodatkowe godziny kontaktowe 5 godz
Szczegółowe treści kształcenia w ramach poszczególnych form zajęć (szczegółowy program wykładów i pozostałych zajęć)
Wykład (50h):
  1. Metody instrumentalnej analizy chemicznej. Proces analityczny.

    1. Definiowanie przedmiotu analizy (analitu) i składników matrycy.
    2. Proces analityczny i jego etapy.
    3. Kryteria i zasady doboru metody analizy.
    4. Przegląd i charakterystyka instrumentalnych metod analizy chemicznej stosowanych w kryminalistyce.

  2. Metody elektrochemiczne stosowane w kryminalistyce.

    1. Konduktometria, kulometria, potencjometria i woltamperometria.
    2. Podstawy teoretyczne, budowa i zasady działania analizatorów elektrochemicznych.
    3. Możliwości aplikacji metod elektrochemicznych w pomiarach bezpośrednich i pośrednich.

  3. Metody screnningowe (polowe) stosowane w kryminalistyce.

    1. Podstawy teoretyczne i możliwości aplikacji metod polowych.
    2. Zasady poboru próbek i prowadzenia oznaczeń polowych.
    3. Ograniczenia metod polowych, ocena jakości uzyskiwanych wyników.

  4. Chromatografia gazowa w kryminalistyce.

    1. Podstawy teoretyczne chromatografii gazowej (GC).
    2. Podstawy teoretyczne, budowa i zasady działania chromatografów gazowych.
    3. Definicje: gaz nośny, dozowniki, kolumny, detektory, dobór parametrów pomiarowych, aparatura, wypełnienia kolumn stosowanych w chromatografii gazowej.
    4. Zalety i ograniczenia stosowalności chromatografii gazowej.
    5. Przykłady zastosowań w kryminalistyce.

  5. Chromatografia cieczowa w kryminalistyce.

    1. Podstawy chromatografii cieczowej (LC).
    2. Podstawy teoretyczne, budowa i zasady działania chromatografów cieczowych.
    3. Definicje: typy faz ruchomych, pompy, dozowniki, wypełnienia kolumn – typy faz stacjonarnych, dobór warunków rozdzieleń – aspekty praktyczne.
    4. Rodzaje chromatografii cieczowych ze względu na oddziaływania: faza stacjonarna-faza ruchoma-próbka.
    5. Zalety i ograniczenia stosowalności chromatografii cieczowej.
    6. Przykłady zastosowań w kryminalistyce.

  6. Spektrometria mas w kryminalistyce.

    1. Podstawy spektrometrii mas (MS).
    2. Podstawy teoretyczne, budowa i zasada działania spektrometrów masowych.
    3. Techniki sprzężone GC-MS i LC-MS.
    4. Zalety i ograniczenia stosowalności spektrometrii mas i technik sprzężonych.
    5. Przykłady zastosowań w kryminalistyce.

  7. Przetwarzanie i interpretacja sygnałów analitycznych.

    1. Podstawowe zasady eliminacji zakłóceń.
    2. Zaawansowane metody przetwarzania sygnałów.
    3. Reguły interpretacji i przedstawiania wyników
    4. Szacowania błędów i niepewności pomiaru.

  8. Pobieranie próbek reprezentatywnych. Przygotowanie próbek analitycznych.

    1. Metody poboru, utrwalania, przechowywania i przygotowania próbek do analizy.
    2. Metody towarzyszące przygotowaniu próbek analitycznych, w tym techniki mineralizacji, roztwarzania, rozdzielania, ekstrakcji i zagęszczania.
    3. Zasady konserwacji próbek do analiz szczegółowych i specjacyjnych.
    4. Reguły określania wielkości próbki.
    5. Efekty matrycy, interferenty, zasady eliminacji zakłóceń.

  9. Zagadnienia jakości pracy w laboratorium chemicznym i jakości uzyskiwanych wyników analiz.

    1. Zagadnienia jakości powietrza, stosowanych odczynników, rozpuszczalników etc.
    2. Zasady pracy w laboratorium analiz instrumentalnych, kontaminacja.
    3. Wzorcowanie urządzeń pomiarowych, kalibracja metod analitycznych.
    4. Wzorce i certyfikowane materiały referencyjne.
    5. Parametry i zasady walidacji procedur analitycznych.

  10. Analiza podstawowa, szczegółowa i specjacyjna.

    1. Zasady pracy w laboratorium analiz śladowych.
    2. Metody i techniki stosowane w analizie szczegółowej i analizie specjacyjnej.
    3. Specjacja w analityce śladów.

  11. Metody spektrometryczne stosowane w kryminalistyce.

    1. Spektroskopia UV-Vis, spektroskopia atomów pobudzonych termicznie, atomowa spektroskopia absorpcyjna.
    2. Podstawy teoretyczne, budowa i zasady działania spektrometrów, możliwości aplikacji.
    3. Zalety i ograniczenia stosowalności metod spektrometrycznych.

  12. Chemometria w kryminalistyce.

    1. Planowanie eksperymentów, projektowanie procedur analitycznych.
    2. Podstawowe narzędzia chemometryczne.
    3. Przykłady zastosowania chemometrii w kryminalistyce.

  13. Podsumowanie materiału i zajęcia zaliczeniowe.

    1. Kierunki rozwoju metod instrumentalnych stosowanych w kryminalistyce.
    2. Czujniki i inteligentne systemy pomiarowe.
    3. Kolokwia zaliczeniowe dla osób, które usprawiedliwiły nieobecność na jednych zajęciach laboratoryjnych lub poprawiają jedną ocenę z kolokwium.

Ćwiczenia laboratoryjne (40h):
  1. Zajęcia organizacyjne.

    1. Prezentacja pracowni i wyposażenia.
    2. Szkolenie w zakresie BHP i ochrony przeciwpożarowej.
    3. Zapoznanie się z regulaminami pracy w pracowniach chemicznych.

  2. Atomowa spektroskopia absorpcyjna z atomizacją próbki w płomieniu.

    1. Oznaczanie pierwiastków metodą atomowej spektroskopii absorpcyjnej techniką płomieniową w uprzednio pobranych i zakonserwowanych próbkach.
    2. Kalibracja i walidacja metody.

  3. Atomowa spektroskopia absorpcyjna z elektrotermiczną atomizacją próbki.

    1. Oznaczanie pierwiastków metodą atomowej spektroskopii absorpcyjnej techniką elektrotermiczną w uprzednio pobranych i zakonserwowanych próbkach.
    2. Kalibracja i walidacja metody.

  4. Woltamperometria stripingowa w analizie toksykologicznej.

    1. Przygotowanie próbek do analizy woltamperometrycznej.
    2. Woltamperometryczne oznaczanie śladów metali ciężkich.
    3. Woltamperometryczna analiza toksycznych substancji organicznych w produktach spożywczych i moczu.

  5. Analiza szczegółowa i specjacyjna.

    1. Pobieranie, utrwalanie i przechowanie próbek do analizy specjacyjnej.
    2. Chemiczna analiza specjacyjna śladów chromu i arsenu.
    2. Spektroskopia UV-Vis i woltamperometria stripingowa – praktyczne przykłady zastosowania w analizie toksykologicznej.

  6. Metody polowe w analizie kryminalistycznej.

    1. Zalety i ograniczenia metod polowych analizy chemicznej.
    2. Wykonanie testów paskowych, odczynnikowych i kuwetowych.
    2. Błyskawiczne analizy chemiczne w miejscu przestępstwa.

  7. Aseptyka chemiczna.

    1. Ocena jakości odczynników i typowych rozpuszczalników.
    2. Pomiary przewodnictwa i pH wody 1-, 2- i 4-krotnie destylowanej.
    3. Oznaczanie cynku metodą spektrofotometryczną za pomocą testów kuwetowych.
    4. Analiza zakodowanych próbek wody z zastosowaniem metod screeningowych.

  8. Pobieranie próbek reprezentatywnych. Przygotowanie próbki analitycznej.

    1. Pobieranie reprezentatywnych próbek stałych i ciekłych.
    2. Ocena reprezentatywności poboru próbki.
    3. Utrwalanie i przygotowanie próbek analitycznych pod kątem analizy składu.
    4. Badania autentyczności przedmiotów zabytkowych.

Pozostałe informacje
Metody i techniki kształcenia:
  • Wykład: Treści prezentowane na wykładzie są przekazywane w formie prezentacji multimedialnej w połączeniu z klasycznym wykładem tablicowym wzbogaconymi o pokazy odnoszące się do prezentowanych zagadnień.
  • Ćwiczenia laboratoryjne: W trakcie zajęć laboratoryjnych studenci samodzielnie rozwiązują zadany problem praktyczny, dobierając odpowiednie narzędzia. Prowadzący stymuluje grupę do refleksji nad problemem, tak by otrzymane wyniki miały wysoką wartość merytoryczną.
Warunki i sposób zaliczenia poszczególnych form zajęć, w tym zasady zaliczeń poprawkowych, a także warunki dopuszczenia do egzaminu:

Zaliczenie ćwiczeń laboratoryjnych stanowi warunek dopuszczenia do egzaminu i zaliczenia przedmiotu.
Ogólne zasady zaliczenia laboratorium:
- w trakcie semestru studenci realizują 8 ćwiczeń tematycznych
- każde ćwiczenie laboratoryjne poprzedza pisemne kolokwium oceniane w skali od 0 do 7 pkt.
- kolokwia obejmują wiedzę z zakresu wykonywanych ćwiczeń laboratoryjnych
- student, który z kolokwium uzyska mniej niż 3 punkty nie będzie dopuszczony do wykonania ćwiczeń praktycznych, i nie może ich odrabiać w terminie późniejszym
- studenci aktywnie uczestniczący w ćwiczeniach praktycznych, składają sprawozdanie oceniane przez prowadzącego ćwiczenie w skali od 0 do 3 pkt.
- student przedkłada sprawozdanie na najbliższych przypadających zajęciach laboratoryjnych, po przekroczonym terminie 2 tygodni od wykonania ćwiczenia ocena ulega obniżeniu o 1 pkt. po 3 tygodniach o 2 pkt. i do 0 pkt. po 4 tygodniach
- złożenie sprawozdania z ćwiczenia jest bezwzględnym warunkiem jego zaliczenia, nawet jeżeli zostanie ocenione na 0 pkt. lub student uzyskał z kolokwium maksymalną liczbę 7 pkt.
- maksymalna liczba punktów możliwa do uzyskania przez studenta w trakcie semestru to 80, do uzyskania zaliczenia z laboratorium wymaganych jest co najmniej 40 pkt. oraz zaliczenie 7 zajęć tematycznych na minimum 5 pkt. z przyjętym sprawozdaniem (brak sprawozdania podobnie lub jego akceptacji przez prowadzącego wyklucza zaliczenie ćwiczenia).
- skala punktów jest skorelowana ze skalą ocen zgodnie z Regulaminem Studiów AGH.

Zasady udziału w zajęciach:
  • Wykład:
    – Obecność obowiązkowa: Nie
    – Zasady udziału w zajęciach: Studenci uczestniczą w zajęciach poznając kolejne treści nauczania zgodnie z syllabusem przedmiotu. Studenci winni na bieżąco zadawać pytania i wyjaśniać wątpliwości. Rejestracja audiowizualna wykładu wymaga zgody prowadzącego.
  • Ćwiczenia laboratoryjne:
    – Obecność obowiązkowa: Tak
    – Zasady udziału w zajęciach: Studenci wykonują ćwiczenia laboratoryjne zgodnie z materiałami udostępnionymi przez prowadzącego. Student jest zobowiązany do przygotowania się w przedmiocie wykonywanego ćwiczenia, co zostanie zweryfikowane pisemnym kolokwium przed dopuszczeniem do prac eksperymentalnych. Zaliczenie zajęć odbywa się na podstawie zaprezentowania rozwiązania postawionego problemu. Zaliczenie modułu jest możliwe po zaliczeniu wszystkich zajęć laboratoryjnych.
Sposób obliczania oceny końcowej:

Ocena końcowa: OK = 0.45OL + 0.55OE
(OL – średnia ocena z ćwiczeń laboratoryjnych, OE – ocena z egzaminu)
Uzyskane oceny końcowe odpowiednio wynoszą:
3.0 < OK ≤ 3.25 ocena 3.0
3.25 < OK ≤ 3.75 ocena 3.5
3.75 < OK ≤ 4.25 ocena 4.0
4.25 < OK ≤ 4.75 ocena 4.5
4.75 < OK ≤ 5.0 ocena 5.0
Student podchodzący do egzaminu w drugim terminie może uzyskać ocenę końcową nie wyższą niż 4.0 (dobry).
Student podchodzący do egzaminu w trzecim terminie może uzyskać ocenę końcową nie wyższą niż 3.0 (dostateczny).
Szczególne przypadki losowe, będą brane pod uwagę i rozpatrywane indywidualnie przez Kierownika przedmiotu, uzasadnione są podstawą przesunięcia terminu pierwszego egzaminu.

Sposób i tryb wyrównywania zaległości powstałych wskutek nieobecności studenta na zajęciach:

- w uzasadnionych przypadkach (choroba, pobyt w szpitalu, poważne zdarzenie losowe) student może odrobić opuszczone ćwiczenie, po uzgodnieniu warunków i terminu z Koordynatorem przedmiotu a następnie z osobą prowadzącą ćwiczenie, pod warunkiem, że istnieje taka możliwość (ćwiczenie jeszcze się odbywa)
- na zajęciach zaliczeniowych student może poprawić tylko 1 ćwiczenie pisząc rozszerzone kolokwium, aby kolokwium zostało zaliczone musi uzyskać co najmniej 5 pkt.
- kolokwium rozszerzone piszą studenci, którzy z przyczyn losowych nie uczestniczyli w jednych ćwiczeniach laboratoryjnych, zostali niedopuszczeni do jednych zajęć z braku przygotowania lub dobrowolnie poprawiają ocenę z dowolnie wybranego ćwiczenia
- maksymalna liczba punktów możliwa do uzyskania z kolokwium zaliczeniowego to 7 pkt.

Wymagania wstępne i dodatkowe, z uwzględnieniem sekwencyjności modułów :

1. Znajomość podstaw chemii, fizyki, matematyki i statystyki.
2. Podstawowa wiedza na chemicznej analizy jakościowej i ilościowej.
3. Obecność na wykładach jest uwzględniona w przypisanych punktach ECTS.
4. Umiejętność pracy z pakietem Office.
5. Wskazana umiejętność korzystania ze źródeł informacji naukowej w języku angielskim.
6. Obecność na wszystkich zajęciach laboratoryjnych jest obowiązkowa.
7. Warunkiem dopuszczenia do ćwiczeń laboratoryjnych jest znajomość Regulaminu BHP poświadczona podpisem studenta na stosownym oświadczeniu.

Zalecana literatura i pomoce naukowe:

1. Wykłady (http://galaxy.uci.agh.edu.pl/~kca/)
2. W. Szczepaniak „Metody instrumentalne w analizie chemicznej” Wyd. Nauk. PWN, W-wa 2008.
3. D. Kealey, P. Haines „Chemia analityczna -Krótkie wykłady” (tł. M. Galus) Wyd. Nauk. PWN, W-wa 2006.
4. A. Hulanicki „Współczesna chemia analityczna” PWN, W-wa 2001.
5. D.A. Skoog, D.M. West, F.J. Holler, S.R. Crouch „Podstawy chemii analitycznej” T.1 i T.2 (tłum. E. Bulska i in.) Wyd. Nauk. PWN W-wa 2007.
6. P.Suder, A. Bodzoń-Kułakowska, J. Silberring (red.) „Spektrometria mas” Wydawnictwa AGH 2016
7. W.W. Kubiak, J. Gołaś „Instrumentalne metody analizy chemicznej” Wyd. Naukowe AKAPIT, Kraków 2005.
8. W. Żyrnicki (red.) „Metody analitycznej spektrometrii atomowej” Wyd. MALAMUT W-wa 2010.
8. J. Minczewski, Z. Marczenko „Chemia analityczna” t.1 i t.2, Wyd. Nauk. PWN W-wa 2008

Publikacje naukowe osób prowadzących zajęcia związane z tematyką modułu:

1. W. Reczyński, T. Bochnia „Metoda atomowej spektroskopii absorpcyjnej i jej zastosowanie w fizjologii roślin” Wiadomości Botaniczne, 1990 vol. 34(4) s.37-45.
2. W. Reczyński, M. Ryczkowski “Boron Distribution in the Developing Ovules of Clivia miniata Regel and Aesculus glabra Willd” Journal of Plant Physiology, 1994 vol. 144 s.623-626.
3. J. Migdalski, T. Błaż, A. Lewenstam „Conducting polymer based ion-selective electrodes” Analytica Chimica Acta, 1996 vol. 322 141-149.
4. W. Blajer, A. Kowalska, W. Reczyński „The bronze artefacts of the upper Vistula river-basin: an archeometric approach” Materiały Archeologiczne XXXI, 1998 s.65-80.
5. B. Baś, Z. Kowalski „Preparation of silver surface for mercury film electrode of prolonged analytical application” Electroanalysis, 2002 vol.14(15-16) s.1067-1071.
6. W. Reczyński, B. Baś, E. Niewiara, Z. Kowalski „Kinetics of arsenic accumulation in sediments of the Dobczyce reservoir” Annals of the Polish Chemical Society, 2003 vol. 2 s.381-385.
7. A. Bobrowski, B. Baś, J. Dominik, E. Niewiara, E. Szalińska, D. Vignati, J. Zarębski „Chromium speciation study in polluted waters using catalytic adsorptive stripping voltammetry and tangential flow filtration” Talanta, 2004 vol.63 s.1003-1012.
8. E. Wyska, J. Szymura-Oleksiak, W. Opoka, B. Baś, E. Niewiara, L. Pomierny, M. Dybała, G. Nowak „Pharmacokinetic interaction after joint administration of zinc and imipramine in forced swim test in mice” Polish Journal of Pharmacology, 2004 vol. 56 s.479-484.
9. B. Baś, M. Jakubowska, Z. Kowalski „Rapid pretreatment of a solid silver electrode for routine analytical practice” Electroanalysis, 2006 vol.18(17) s.1710-1717.
10. W. Reczyński, W.M. Kwiatek, B. Kubica, J. Gołaś, M. Jakubowska, E. Niewiara, E. Dutkiewicz, M. Stobiński, M. Skiba „Rozkład wybranych metali ciężkich w osadach dennych Zbiornika Dobczyckiego” Journal of Elementology, 2006 vol. 11(3) s.347-356.
11. B. Baś „Refreshable mercury film silver based electrode for determination of chromium(VI) using catalytic adsorptive stripping voltammetry” Analytica Chimica Acta, 2006 vol.570 s.195-201.
12. R. Piech, B. Baś, E. Niewiara, W.W. Kubiak „Determination of trace arsenic on hanging copper amalgam drop electrode” Talanta, 2007 vol.72 s.762-767.
13. B. Baś, M. Jakubowska „Estimation of non-ionic, surface-active substances in aqueous solutions by means of the Controlled Growth Mercury Electrode” Analytica Chimica Acta, 2007 vol.592 s.218-225.
14. J. Dominik, D.A.L. Vignati, B. Kaukal, M.-H. Pereira de Abreu, R. Kottelat, E. Szalińska, B. Baś, A. Bobrowski „Speciation and environmental fate of chromium in rivers contaminated with tannery effluents” Engineering in Life Sciences, 2007 vol.7(2) s.155-169.
15. R. Piech, B. Baś, W.W. Kubiak „The cyclic renewable mercury film silver based electrode for determination of uranium(VI) traces using adsorptive stripping voltammetry” Electroanalysis, 2007 vol.19(22) s.2342-2350.
16. B. Baś „The renovated silver ring electrode” Electrochemistry Communications, 2008 vol.10 s.156-160.
17. B. Baś, M. Jakubowska „The renovated silver ring electrode in determination of lead traces by differential pulse stripping voltammetry” Analytica Chimica Acta, 2008 vol.615 s.39-46.
18. B. Baś, R. Piech, E. Niewiara, M. Ziemnicka, L. Stobierski, W.W. Kubiak „TiC Working electrode: voltammetric characteristics and application for determination of lead traces by stripping voltammetry” Electroanalysis, 2008 vol.20(15) s.1655-1664.
19. W. Opoka, M. Sowa-Kućma, M. Kowalska, B. Baś, K. Gołębiowska, G. Nowak „Intraperitoneal zinc administration increases extracelluar zinc in the rat prefrontal cortex” Journal of Physiology and Pharmacology, 2008 vol.59(3) s.477-487.
20. R. Piech, B. Baś, E. Niewiara, W.W. Kubiak „Renewable copper and silver amalgam film electrodes of prolonged application for the determination of elemental sulfur using stripping voltammetry” Electroanalysis, 2008 vol.20(7) s.809-815.
21. R. Piech, B. Baś, W.W. Kubiak „The cyclic renewable mercury film silver based electrode for determination of manganese(II) traces using anodic stripping voltammetry” Journal of Electroanalytical Chemistry, 2008 vol.621 s.43-48.
22. R. Piech, B. Baś, W.W. Kubiak „The cyclic renewable mercury film silver based electrode for determination of molybdenum(VI) traces using adsorptive stripping voltammetry” Talanta, 2008 vol.76 s.295-300.
23. R. Piech, B. Baś, B. Paczosa-Bator, W.W. Kubiak „Adsorptive stripping voltammetric determination of vanadium(V) witch chloranilic acid using cyclic renewable mercury film silver based electrode” Journal of Electroanalytical Chemistry, 2009 vol.633 s.333-338.
24. M. Jakubowska, B. Baś, W.W. Kubiak „End-point detection in potentiometric titration by continuous wavelet transform” Talanta, 2009 vol. 79 s.1398-1405.
25. J. Migdalski, B. Baś, T. Błaż, J. Golimowski, A. Lewenstam „A miniaturized and integrated galvanic cell for the potentiometric measurement of ions in biological liquids” Journal of Solid State Electrochemistry, 2009 vol.13 s.149-155.
26. B. Baś, M. Jakubowska, M. Jeż, F. Ciepiela „Novel renovated silver ring electrode for anodic stripping analysis of Pb(II) and Cd(II) traces in water samples without removal of oxygen and surfactants” Journal of Electroanalytical Chemistry, 2010 vol.638 s.3-8.
27. E. Szalińska, J. Dominik, Davide A.L. Vignati, A. Bobrowski, B. Baś „Seasonal transport pattern of chromium(III and VI) in a stream receiving wastewater from tanneries” Applied Geochemistry, 2010 vol.25 s.116-122.
28. B. Baś, S. Baś „Rapidly renewable silver amalgam annular band electrode for voltammetry and polarography” Electrochemistry Communications, 2010 vol.12 s.816-819.
29. M. Jakubowska, B. Baś, F. Ciepiela, W.W. Kubiak „A calibration strategy for stripping voltammetry of lead on silver electrodes” Electroanalysis, 2010 vol.22(15) s.1757-1764.
30. B. Baś, M. Jakubowska, F. Ciepiela, W.W. Kubiak „New multipurpose electrochemical analyzer for scientific and routine tasks” Instrumentation Science & Technology, 2010 vol.38(6) s.421-426.
31. W. Opoka, D. Adamek, M. Płonka, W. Reczyński, B. Baś, D. Drozdowicz, P. Jagielski, Z. Śliwowski, P. Adamski, T. Brzozowski „Importance of luminal and mucosal zinc in the mechanism of experimental gastric ulcer healing” Journal of Physiology and Pharmacology, 2010 vol. 61(5) s.581-591.
32. W. Reczyński, M. Jakubowska, J. Gołaś, A. Parker, B. Kubica „Chemistry of sediments from the Dobczyce Reservoir, Poland, and the environmental implications” International Journal of Sediment Research, 2010 vol. 25(1) s.28-38.
33. B. Baś, M. Jakubowska, Ł. Górski „Application of renewable silver amalgam annular band electrode to voltammetric determination of vitamins C, B1 and B2” Talanta, 2011 vol. 84(4) s.1032-1037.
34. M. Sowa-Kućma, M. Kowalska, M. Szlósarczyk, K. Gołębiowska, W. Opoka, B. Baś, A. Pilc, G. Nowak „Chronic treatment with zinc and antidepressant induces enhancement of presynaptic/extracellular zinc concentration in the rat prefrontal cortex” Amino Acids, 2011 vol. 40 s.249-258.
35. R. Piech, B. Baś „Sensitive voltammetric determination of gallium in aluminium materials using renewable mercury film silver based electrode” International Journal of. Environmental Analytical Chemistry, 2011 vol. 91 no. 5 s.410-420.
36. W. Opoka, M. Jakubowska, B. Baś, M. Sowa-Kućma „Development and validation of an anodic stripping voltammetric method for determination of Zn2+ ions in brain microdialysate samples” Biological Trace Element Research, 2011 vol. 142 no. 3 s.671-682.
37. Ł. Górski, M. Jakubowska, B. Baś, W.W. Kubiak, „Application of genetic algorithm for baseline optimization in standard addition voltammetry” Journal of Electroanalytical Chemistry, 2012 vol. 684 s.38-46.
38. R. Piech, B. Baś, W.W. Kubiak, B. Paczosa-Bator „Fast cathodic stripping voltammetric determination of elemental sulfur in petroleum fuels using renewable mercury film silver based electrode: short communication” Fuel, 2012 vol. 97 s.876-878.
39. B. Baś, A. Bugajna, M. Jakubowska, E. Niewiara „Normal pulse voltammetric determination of subnanomolar concentrations of chromium(VI) with continuous wavelet transformation” Electroanalysis, 2012 vol. 24(11) s.2157-2164.
40. B. Baś, M. Jakubowska, W. Reczyński, F. Ciepiela, W.W. Kubiak „Rapidly renewable silver and gold annular band electrodes” Electrochimica Acta, 2012 vol. 73 s.98-104.
41. B. Baś, A. Bugajna, M. Jakubowska, W. Reczyński, A. Smalec „The renewable glassy carbon annular band electrode in a highly sensitive normal pulse voltammetric determination of paracetamol with continuous wavelet transformation” Electrochimica Acta, 2013 vol. 99 190-197.
42. T. Błaż, B. Baś, J. Kupis, J. Migdalski, A. Lewenstam „Multielectrode potentiometry in a one-drop sample” Electrochemistry Communications, 2013 vol.34 s.181-184.
43. B. Paczosa-Bator, L. Cabaj, R. Piech, K. Skupień „Potentiometric sensors with carbon black supporting platinum nanoparticles” Analytical Chemistry, 2013 vol. 85(21) s.10255-10261.
44. W. Reczyński, B. Muszyńska, W. Opoka, A. Smalec, K. Sułkowska-Ziaja, M. Malec „Comparative study of metals accumulation in cultured in vitro mycelium and naturally grown fruiting bodies of Boletus badius and Cantharellus cibarius” Biological Trace Element Research, 2013 vol. 153(1-3) s. 355-362.
45. K. Młyniec, B. Budziszewska, W. Reczyński, M. Sowa-Kućma, G. Nowak „The role of GPR39 receptor in zinc deficient-animal model of depression” Behavioural Brain Research, 2013 vol. 238 s.30-35.
46. J. Migdalski, T. Błaż, A. Lewenstam „Conducting polymers – mechanisms of cationic sensitivity and the methods of inducing thereof” Electrochimica Acta, 2014 vol. 133 s.316-324.
47. K. Młyniec, B. Ostachowicz, A. Krakowska, W. Reczyński, W. Opoka, G. Nowak „Chronic but not acute antidepressant treatment alters serum zinc/copper ratio under pathological/zinc-deficient conditions in mice” Journal of Physiology and Pharmacology, 2014 vol. 65(5) 673-678.
48. R. Piech, M. Szlósarczyk, W. Opoka, B. Paczosa-Bator, B. Baś, J. Krzek, B. Muszyńska „Application of hanging copper amalgam drop electrode for voltammetric determination of selenium content in fruiting bodies of selected mushrooms” International Journal of Environmental Analytical Chemistry, 2014 vol. 94(3) s.269-276.
49. M. Jeż, M. Mitoraj, E. Godlewska, M. Jakubowska, B. Baś „Evaluation of corrosion behavior of selected metallic samples by electrochemical noise measurements” Journal of Solid State Electrochemistry, 2014 vol. 18 no. 6 s.1635-1646.
50. B. Paczosa-Bator, L. Cabaj, M. Raś, B. Baś, R. Piech „Potentiometric sensor platform based on a carbon black modified electrodes” International Journal of Electrochemical Science, 2014 vol. 9(6) s.2816-2823.
51. B. Baś, K. Jedlińska, K. Węgiel „New electrochemical sensor with the renewable silver annular band working electrode: Fabrication and application for determination of selenium(IV) by cathodic stripping voltammetry” Electrochemistry Communications, 2014 vol. 49 s.79-82.
52. B. Baś, K. Węgiel, K. Jedlińska „The renewable bismuth bulk annular band working electrode: fabrication and application in the adsorptive stripping voltammetric determination of nickel(II) and cobalt(II)” Analytica Chimica Acta, 2015 vol. 881, s.44-53.
53. K. Młyniec, M. Gaweł, T. Librowski, W. Reczyński, B. Bystrowska, B. Holst „Investigation of the GPR39 zinc receptor following inhibition of monoaminergic neurotransmission and potentialization of glutamatergic neurotransmission” Brain Research Bulletin, 2015 vol. 115 s.23-29.
54. B. Baś, K. Węgiel, K. Jedlińska „New voltammetric sensor based on the renewable bismuth bulk annular band electrode and its application for the determination of palladium(II)” Electrochimica Acta, 2015 vol. 178 s.665-672.
55. A. Krakowska, B. Muszyńska, W. Reczyński, W. Opoka, W. Turski „Trace metal analyses in honey samples from selected countries: a potential use in bio-monitoring” International Journal of Environmental Analytical Chemistry, 2015 vol. 95(9) s.855-866.
56. B. Paczosa-Bator „Ion-selective electrodes with superhydrophobic polymer/carbon nanocomposites as solid contact” Carbon, 2015 vol. 95 s.879-887.
57. B. Paczosa-Bator, M. Pięk, R. Piech „Application of nanostructured TCNQ to potentiometric ion-selective K+ and Na+ electrodes” Analytical Chemistry, 2015 vol. 87(3) s.1718-1725.
58. J. Kupis-Rozmysłowicz, M. Wagner, J. Bobacka, A. Lewenstam, J. Migdalski „Biomimetic membranes based on molecularly imprinted conducting polymers as a sensing element for determination of taurine” Electrochimica Acta, 2016 vol. 188 s.537-544.
59. L. Hamerlík, D. Dobríková, K. Szarłowicz, W. Reczyński, B. Kubica, F. Šporka, P. Bitušík „Lake biota response to human impact and local climate during the last 200 years: a multi-proxy study of a subalpine lake (Tatra Mountains, W Carpathians)” Science of the Total Environment, 2016 vol. 545-546 s.320-328.
60. K. Węgiel, K. Jedlińska, B. Baś „Application of bismuth bulk annular band electrode for determination of ultratrace concentrations of thallium(I) using stripping voltammetry” Journal of Hazardous Materials, 2016 vol.310 s.199-206.
61. M. Siwek, M. Sowa-Kućma, K. Styczeń, B. Szewczyk, W. Reczyński, P. Misztak, R. Topór-Mądry, G. Nowak, D. Dudek, J. K. Rybakowski „Decreased serum zinc concentration during depressive episode in patients with bipolar disorder” Journal of Affective Disorders, 2016 vol. 190 s.272-277.
62. T. Błaż, A. Lewenstam, J. Migdalski „All-solid-state reference electrode with heterogeneous membrane” Analytical Chemistry, 2017 vol. 89 s.1068-1072.
63. B. Bartoszewicz, S. Dąbrowska, A Lewenstam, Jan Migdalski “Calibration free solid contact electrodes with two PVC based membranes” Sensors and Actuators B. Chemical, 2018 vol. 274 s.268-273.
64. J. Smajdor, R. Piech, B. Paczosa-Bator „Spironolactone voltammetric determination on renewable amalgam film electrode” Steroids, 2018 vol. 130, s.1-6.
65. J. Smajdor, R. Piech, B. Paczosa-Bator „Highly sensitive voltammetric determination of dexamethasone on amalgam film electrode” Journal of Electroanalytical Chemistry, 2018 vol. 809, s.147-152.
66. J. Smajdor, R. Piech, M. Ławrywianiec, B. Paczosa-Bator „Glassy carbon electrode modified with carbon black for sensitive estradiol determination by means of voltammetry and flow injection analysis with amperometric detection” Analytical Biochemistry, 2018 vol. 544, s.7-12.
67. M. Baszczyk, P. Dorosz, Ł. Mik, W. Kucewicz, W. Reczyński, M. Sapor „A readout circuit dedicated for the detection of chemiluminescence using a silicon photomultiplier” Journal of Instrumentation, 2018 vol. 13 s.1-12.
68. S. Dąbrowska, J. Migdalski, A Lewenstam „A Breakthrough Application of a Cross-Linked Polystyrene Anion-Exchange Membrane for a Hydrogencarbonate Ion-Selective Electrode” Sensors, 2019 vol. 19(6) s.1268-1274.

Informacje dodatkowe:

Regulamin BHP
Ogólne zasady organizacji pracy w laboratorium chemicznym
W laboratorium chemicznym można pracować jedynie w obecności co najmniej jednej osoby.
Zabrania się przebywania w laboratorium poza godzinami realizowanych ćwiczeń.
Zabrania się wchodzenia do laboratorium bez fartucha ochronnego zapiętego na guziki.
Zabrania się wnoszenia i przechowywania odzieży wierzchniej jak kurtki, płaszcze etc.
Zabrania się spożywania posiłków, napojów i palenia tytoniu.
Zabrania się prowadzenia rozmów przez telefony komórkowe.
Zabrania się prowadzenie głośnych rozmów i przyjmowania osób postronnych.
Zabrania się tarasowania ciągów komunikacyjnych i wyjść ewakuacyjnych.
Zabrania się wykonywania eksperymentów bez nadzoru prowadzącego zajęcia.
Zabrania się wykonywania eksperymentów i prac nie wchodzących w zakres ćwiczeń.
Zabrania się korzystania z naczyń pękniętych i uszkodzonych.
Zabrania się dotykania, wąchania i kosztowania substancji chemicznych i roztworów.
Zabrania się pipetowania wszystkich roztworów ustami.
Zabrania się ogrzewania cieczy palnych nad otwartym palnikiem.
Zabrania się ogrzewania substancji stałych i cieczy w naczyniach zamkniętych.
Zabrania się dodawania kwasów i zasad do rozgrzanych cieczy i naczyń.
Zabrania się samodzielnego zapalania palników spektrometrów.
Zabrania się podłączać do sieci zasilającej urządzenia elektryczne z uszkodzonym wtykiem lub izolacją.
Zabrania się korzystać z uszkodzonych gniazd sieciowych.
Zabrania się podłączać urządzeń elektrycznych wymagających uziemienia do gniazd sieciowych, nie posiadających kołków uziemiających.
Zabrania się stosować przedłużaczy bez przewodów uziemiających.
Zabrania się wyłączać urządzenia elektryczne przez ciągnięcie za przewód sieciowy.
Zabrania się używać przewodów nieizolowanych i bez wtyczek nawet dla niskich napięć zasilających 24 i 12 V.
ZAWSZE
Przed przystąpieniem do ćwiczeń zapoznaj się z ogólnymi zasadami jego wykonywania.
Poznaj właściwości fizykochemiczne i toksyczne wszystkich substancji chemicznych, które będziesz stosować w pracy z kart charakterystyk.
Zamykaj pojemnik natychmiast po pobraniu odczynnika.
Nakrętkę pojemnika trzymaj w palcach i nigdy nie odkładaj np. stół laboratoryjny.
Odsypuj odczynnik z pojemnika lub odlewaj odpowiednią jego ilość.
Nie wprowadzaj z powrotem do opakowania niezużytego odczynnika.
Po rozsypaniu odczynnika czy rozlaniu roztworu natychmiast posprzątaj miejsce pracy.
Stosuj środki ochrony indywidualnej (okulary, osłony twarzy, rękawice, fartuchy etc.)
Urządzenia elektryczne użytkuj wyłącznie zgodnie z instrukcją, przestrzegając kolejności włączania i wyłączania poszczególnych elementów.
Przed zapaleniem palnika sprawdź, czy wąż doprowadzający gaz do palnika nie jest uszkodzony i czy jest dokładnie nasunięty na króciec palnika.
Przed zapaleniem zamknij dopływ powietrza do palnika a po zapaleniu reguluj dopływ powietrza ustalając odpowiedni charakter i wysokość płomienia.
Gdy płomień „przeskoczy” zgaś natychmiast palnik (ponowne zapalenie jest możliwe po ostygnięciu palnika).
Do zapalania palnika używaj wyłącznie zapałek lub odpowiedniej zapalniczki, w żadnym wypadku nie stosuj sączków, skrawków papieru etc.
Sprawdź sprawność instalacji wentylacyjnej w tym wentylacji dygestoriów.
Zbieraj lub neutralizuj odpady chemiczne.
Ustal miejsce, w którym przechowywane są środki ratunkowe (natryski, myjki oczu, środki neutralizujące, opatrunkowe etc.) oraz środki służące do gaszenia pożarów.
Przed przystąpieniem do pracy sprawdź czy działają wyciągi, jeżeli nie zostały załączone, włącz lub zgłoś prowadzącemu zajęcia.
Prace, podczas których może dojść do wydostania do atmosfery laboratorium szkodliwych substancji, a także koniecznej ochrony przed ewentualnymi pożarami i eksplozjami prowadź pod dygestorium.
Zaplanuj postępowanie w wypadku powstania zakłóceń w pracy (pożar, wybuch etc.)
Stężone kwasy i zasady rozcieńczaj wyłącznie przez dodawanie kwasu lub zasady do wody nigdy odwrotnie.
Zabezpieczaj pionową pozycję butli przez odpowiednie paski czy łańcuchy.
Otwieraj główny zawór butli gdy reduktor jest zainstalowany, a wyloty regulacyjne zamknięte.
Otwieraj i zamykaj główny zawór butli ręką.
Zwalniaj reduktor trzymając go z dala od oczu i twarzy.
Dokładnie przeglądaj wszystkie szklane elementy aparatury badawczej i szklane naczynia czy nie są mechanicznie uszkodzone.
Używaj odpowiedniej łaźni do podgrzewania, wybierając odpowiedni zakres temperatur.
Stosuj mieszanie podczas podgrzewania mieszaniny reakcyjnej, gdy jest to technicznie niemożliwe użyj kamyczków wrzennych.
Stosuj kamyki wrzenne, aby zapobiec burzliwemu wrzeniu i przegrzewaniu.
Gdy jest to możliwe stosuj płaszcze grzejne z regulacją termiczną odpowiednich rozmiarów.
Używaj szczypców, klamer, uchwytów i izolujących rękawic do przenoszenia naczyń do reakcji w wysokich temperaturach.
Wyciągaj tygle do topienia i inne rozgrzane naczynia z pieca za pomocą odpowiednich szczypiec.
Ochładzaj tygle do topienia na specjalnych ceramicznych trójkątach pod wyciągiem.
Używaj szkła żaroodpornego typu Pyrex.
Staraj się zabezpieczać aparaturę szklaną przed szokiem termicznym.
Dbaj o porządek i ład na stanowisku pracy.
Przed opuszczeniem stanowiska sprawdź stan urządzeń zasilanych z instalacji elektrycznej, wodnej i gazowej.
Wszystkie wykryte usterki zgłaszaj prowadzącemu zajęcia.
Stosuj się do lokalnych wymagań prawnych regulujacych zasady utylizacji odczynników i ścieków.
Zwracaj się do prowadzącego zajęcia lub osoby odpowiedzialnej za bezpieczeństwo w przypadku zaistnienia jakichkolwiek wątpliwości.
NIGDY
Nie wahaj się zwrócić do prowadzącego zajęcia, osoby przez niego wskazanej lub osoby odpowiedzialnej za bezpieczeństwo w przypadku wystąpienia problemów lub wątpliwości.
Nie stosuj substancji, które nie mają ustalonego stopnia szkodliwości dla twojego zdrowia, pamiętaj że produkty powstające podczas reakcji chemicznych muszą również mieć ustaloną szkodliwość dla zdrowia.
Nie wyłączaj źródeł i odbiorników prądu mokrymi rękami.
Nie zdejmuj osłon z części wirujących maszyn i urządzeń w czasie ich pracy.
Nie używaj odczynników chemicznych nie posiadających etykiet.
Nie wciągaj ustami odczynników i ich roztworów.
Nie wąchaj cieczy bezpośrednio nad naczyniem.
Nie wprowadzaj sprzętu; łopatki, łyżeczki, pipety etc. do oryginalnego opakowania z odczynnikiem czy roztworem.
Nie używaj wyszczerbionego lub popękanego szkła laboratoryjnego.
Nie używaj nadmiernej siły do zamykania głównego zaworu na butli.
Nie przekraczaj dozwolonej maksymalnej wartości ciśnienia oznaczonej na manometrze.
Nie przenoś naczyń reakcyjnych gołymi rękami.
Nie dotykaj palników, płyt grzejnych i innych mediów grzewczych,
Nie ogrzewaj naczyń reakcyjnych trzymając je w rękach – używaj uchwytu lub innego solidnego narzędzia.
Nie ogrzewaj naczyń reakcyjnych otwartych płomieniem.
Nie używaj przypadkowych naczyń czy pojemników szklanych do ogrzewania.
Nie dotykaj suchego lodu, ciekłego azotu, czy innej cieczy kriogenicznej gołymi rękoma.
Nie pozostawiaj rozlanych i rozsypanych substancji chemicznych.
PAMIĘTAJ
Resztki roztworów należy zlewać wyłącznie do specjalnie oznakowanych i przeznaczonych do tego celu pojemników znajdujących się w laboratorium.
Wlewanie stężonego kwasu siarkowego do wody grozi wybuchem tak samo jak zlewanie razem stężonych kwasów i zasad ze względu na wydzielające się duże ilości ciepła hydratacji kwasu siarkowego lub neutralizacji kwasów zasadami.
Miejsca oparzone kwasami i żrącymi ługami należy niezwłocznie przemywać strumieniem bieżącej wody z kranu czerpalnego przez 10-15 minut. Po dokładnym obmyciu wodą, na miejsca oparzone kwasami należy nałożyć okład z roztworem sody, a na miejsca oparzone ługiem nałożyć okład ze słabego roztworu octu, albo kwasu bornego.
PRZED OPUSZCZENIEM LABORATORIUM:
- sprawdź czy wyłączono palniki gazowe
- sprawdź czy stoły laboratoryjne zostały posprzątane
- sprawdź czy w naczyniach nie pozostały resztki roztworów
- sprawdź czy zostały zakręcone krany wodociągowe
- sprawdź czy został zakręcony dopływ gazu
- sprawdź czy zostały zakręcone zawory butli z gazami sprężonymi
- wyłącz zasilanie wentylatorów
- wyłącz zasilanie gniazd sieciowych wyłącznikiem głównym.

Wskazówki pierwszej pomocy w wybranych wypadkach
Telefony alarmowe
Pogotowie ratunkowe – 999
Straż Pożarna – 998

Urazy oczu
W razie pryśnięcia do oka kwasów, ługów etc. wskazania pierwszej pomocy są następujące:
• rozchylić kciukiem i palcem wskazującym zaciśnięte kurczowo powieki
• przepłukać oko dużą ilości czystej, letniej wody (strumień wody w kierunku od nosa do skroni)
• nałożyć opatrunek ochronny na oczy (jeżeli zapryskane jest tylko jedno oko również na oko zdrowe nałożyć opatrunek ochronny)
• poszkodowanego skierować natychmiast do lekarza okulisty.
W razie zranienia gałki ocznej odłamkami szkła:
• założyć na oko wyjałowiony opatrunek osobisty,
• poszkodowanego skierować natychmiast do lekarza okulisty.
Uwaga!
Jeżeli obce ciało tkwi w oku pod powieką górną lub dolną można je przed założeniem opatrunku ostrożnie wyjąć brzeżkiem zwilżonej czystej chustki lub zwilżonym wacikiem.

Skaleczenia
W przypadku skaleczeń wskazania pierwszej pomocy są następujące:
• rany nie dotykać palcami
• nie oczyszczać rany, nie przemywać jej wodą ani żadnym płynem odkażającym
• nie usuwać z rany skrzepów krwi ani ciał obcych
• nie kłaść na ranę bezpośrednio waty, ligniny ani chusteczki higienicznej
• założyć suchy, jałowy opatrunek (apteczka znajduje się na sali ćwiczeń)
• poszkodowanego skierować do najbliższego szpitala pełniącego dyżur.
*Uwaga! *
W przypadku drobnych zranień wystarcza przemyć ranę 3% roztworem wody utlenionej i przylepić „Prestoplast”. Nigdy nie należy nakładać na zranione miejsce przylepca bez gazy.

Oparzenia termiczne
W przypadku oparzeń termicznych należy:
• odsłonić poparzone miejsca, z palców zdjąć koniecznie obrączki, pierścionki etc.
• poparzone miejsca schładzać przez 15 minut strumieniem zimnej wody
• w razie rozległych oparzeń lub zerwania pęcherzy, wezwać natychmiast lekarza lub odwieść poszkodowanego do szpitala
• osobę płonącą, gdy nie ma natrysku, przewrócić i zadusić na nim ogień np. kocem, nie dopuścić płonącemu biegać – wezwać natychmiast lekarza
• przy silnych bólu podać środki przeciwbólowe.

Oparzenia chemiczne
Przy oparzeniach substancjami żrącymi miejsce poparzone należy niezwłocznie obficie spłukać niezbyt silnym strumieniem wody. Następnie założyć jałowy opatrunek i skierować poszkodowanego do lekarza.

Zatrucia
W przypadku zatrucia należy:
• usunąć zatrutego ze strefy skażonej
• w przypadku oblania trucizną (fenol, anilina etc.) należy zdjąć natychmiast odzież skażoną i spłukać truciznę z powierzchni ciała
• jeżeli to konieczne zastosować sztuczne oddychania lub podawać tlen i wezwać lekarza
• przy zatruciach substancjami powodującymi objawy z tzw. okresem utajenia (tlenki azotu, siarczan dimetylu, anilina, nitrobenzen etc.) nie wolno dopuścić do żadnego wysiłku fizycznego u chorego, nawet jeżeli pozornie czuje się on dobrze.

Porażenie prądem elektrycznym
W przypadku porażenia prądem elektrycznym należy:
• „odciąć” porażonego od źródła napięcia (obowiązuje izolacja rąk osoby niosącej pomoc)
• w razie stwierdzenia, że poszkodowany nie oddycha, zastosować sztuczne oddychanie i nie przerywać go dopóty, dopóki nie wystąpią oznaki samodzielnego oddychania lub wyraźne oznaki śmierci (plamy pośmiertne),
• natychmiast wezwać lekarza.

Regulamin pracy z rtęcią
• Rtęć jest silnie toksyczna, szczególnie, jeśli dostaje się do organizmu poprzez drogi oddechowe. Rtęć ma zdolność kumulowania się w organizmie.
• Do prac z rtęcią służy pokój polarograficzny.
• Rtęć należy przechowywać w zamkniętych butelkach z grubego szkła.
• Rtęć w naczyniach otwartych musi być pokryta warstwą wody.
• Wszelkie operacje z rtęcią należy wykonywać nad tacą.
• W przypadku rozlania rtęci zbiera się ją bezwarunkowo pędzelkiem lub bibułą w większe krople i przenosi do naczynia z wodą.
• Drobne kropelki rtęci zbiera się drucikiem lub blaszką cynkową. Można także wiązać rtęć sproszkowanym glinem, cynkiem, mosiądzem, miedzią, siarką lub zamraża się ją ciekłym azotem.
• Nie wolno przechowywać rtęci w pobliżu źródeł ciepła.
• W pracowni polarograficznej szczególną uwagę należy zwrócić na czystość stanowiska pracy. Spożywanie jakichkolwiek posiłków w pracowni jest surowo zabronione.
• W pracowni polarograficznej obowiązuje indywidualny „Regulamin Pracowni” oraz „Instrukcja BHP”.

Instrukcja postępowania podczas pracy ze stężonymi kwasami i ługami
Środki ostrożności podczas pracy z kwasami:
1. W pomieszczeniach, gdzie pracuje się ze stężonymi kwasami i ługami należy dbać o dobrą wentylację. Kwas solny o stężeniu powyżej 25% „dymi” na powietrzu. Jego pary działają drażniąco na błony śluzowe oka, dróg oddechowych i przewodu pokarmowego.
2. Kwasy i ich roztwory należy przechowywać w oryginalnych, odpowiednio oznakowanych pojemnikach.
3. Podczas pracy z kwasami i ługami należy zawsze stosować środki ochrony indywidualnej (okulary, rękawice, fartuch etc.).
4. Podczas rozcieńczania kwasów należy zawsze wlewać kwas do wody (chłodnej) nigdy odwrotnie, nie zaprzestając mieszania roztworu.
5. Kwas i ługi należy nabierać pipetą zaopatrzoną w nasadkę lub pompkę, nigdy nie wolno zasysać ich ustami.
6. W sąsiedztwie stanowiska do pracy z kwasami musi się znajdować umywalka z wodą oraz apteczka podręczna.
7. Zabrania się wylewania stężonych kwasów i ługów bezpośrednio do zlewu.
8. W razie polania się stężonym kwasem miejsce poparzone spłukać obficie wodą. Zwykle skutki poparzenia objawiają się po pewnym czasie. Intensywność poparzenia zależy od stężenia kwasu, czasu kontaktu ze skórą i temperatury kwasu.
9. Podczas pracy z kwasem azotowym należy wystrzegać się wdychania brunatnych tlenków azotu.
Środki ostrożności podczas pracy z ługami:
1. Wodorotlenki stałe oraz ich roztwory przechowywać w oryginalnych lub odpowiednich dobrze oznakowanych naczyniach.
2. Używać okulary ochronne, fartuch oraz rękawice gumowe oraz osłaniać twarz podczas rozbijania brył wodorotlenków.
3. Wodorotlenki stałe rozpuszczać w wodzie używając naczyń odpornych na wysokie temperatury.
4. W razie kontaktu wodorotlenków ze skórą należy miejsce kontaktu spłukać obficie wodą. Nieostrożne obchodzenie się z wodorotlenkami może prowadzić do silnego poparzenia skóry do trzeciego stopnia włącznie. Początkowo skóra staje się śliska, śluzowata, a przy dłuższym działaniu ługu tworzą się głębokie rany, trudne do zagojenia.